更新时间:2026-01-15 12:57 来源:牛马见闻
Hippo signaling disruption and Akt stimulation of ovarian follicles for infertility treatment.Blocking of Β-Adrenergic
<p align="center"></p> <p>这是不是很多(女性的共同困扰[:20+焦虑卵巢早衰,30+发现月经周期变乱,担心内分泌失调,40+看着皮肤状态下滑、情绪波动变大,又害怕更年期提前找上门。我们都知道,卵巢从来不是单纯的生育工具,更关乎女性自身的健康和衰老。</p> <p>其实,随着相关科研的不断发展,大众对卵巢衰老的认知也一直在完善中。近期《Science》上一项重磅研究,又补充了关键新视角:首次带我们看清了人类卵巢的真实微观世界, 并发现很多有意思的现象:卵子原来是住在专属口袋里;衰老卵巢里的神经,竟反常识的没有慢慢安静反而更活跃…[1]。</p> <p align="center"></p> <p align="center"></p> <p align="center"><strong>衰老新视角:卵巢微环境的系统性失衡</strong></p> <p>首先,让我们一起回顾下卵巢衰老的过往研究,看看目前为止,科学家们都从哪些角度对卵巢衰老进行了探索。</p> <p>“卵子枯竭”说:认为卵巢像卵子仓库,衰老就是卵子随年龄增长逐渐消耗、直至耗尽的过程[2]。</p> <p>“激素失衡”说:认为衰老源于下丘脑-垂体-卵巢轴的信号紊乱,导致促进卵泡生成的相关激素信号出现异常[2]。</p> <p>“细胞退化”说:关注卵子本身的质量变化,比如染色体异常、线粒体衰退等细胞层面的功能下降[3]。</p> <p> “孤立机制”说:深入到单个基因或蛋白,它们的异常(如LMD-3/NCOA7功能缺陷、SIRT6缺失)影响卵巢状态[4-6]。</p> <p>以上这些传统认知,已经从多个不同角度解释了卵巢衰老的部分表现。那接下来,准备再次接受又一个新知识的洗礼吧——衰老卵巢的微环境之变。</p> <p align="center"></p> <p><strong>1)生存空间缩水</strong></p> <p>卵子不是均匀分布在卵巢中,而是住在特定的“卵泡口袋”里。研究发现,高龄女性(37-58岁)的这些口袋会显著萎缩,相当于卵子的生存空间被物理压缩了。</p> <p align="center"></p> <p align="center">图注:卵泡密度随年龄断崖式下降(ERA:早期生殖年龄;ARA:晚期生殖年龄)</p> <p><strong>2)生存环境恶化</strong></p> <p>不仅生存空间缩水,生存环境也越来越恶劣。随着卵巢衰老,胶原蛋白等细胞外成分会异常沉积,导致卵巢纤维化硬化,血管被挤压、传输通道被堵住,再好的营养也送不进卵子。</p> <p><strong>3)</strong><strong>调控信号过载</strong></p> <p>不同于衰老卵巢里大部分功能发生衰退,交感神经密度不减反增。神经系统发出过强且嘈杂的干扰信号,就会扰乱卵泡正常的发育节律,白白透支、加速消耗宝贵的卵泡储备。</p> <p><strong>4)细胞社交网络中断</strong></p> <p>卵子的成熟,离不开周围细胞的协同配合——它们通过KIT、BMP等信号通路传递营养和调控信号。但衰老卵巢里,细胞之间的通讯受损,卵子无法获得充足支持,就变成了孤立无援的个体,难以维持好状态。</p> <p>在这里,我们把卵巢看成了一个生态圈——生存空间萎缩、土壤硬化、信号嘈杂、沟通中断,这一系列变化,让卵巢慢慢变得不再宜居。</p> <p>既然卵巢环境如此关键,为什么过去的研究和治疗,没能尽早发现这些问题呢?</p> <p align="center"></p> <p align="center"><strong>模型局限:金标准小鼠,无法完全复刻人类衰老</strong></p> <p>答案其实就藏在我们长期依赖的“科学替身”——小鼠模型之中,它并未告诉我们人类卵巢衰老的全部真相。</p> <p align="center"></p> <p>其中,C57BL/6小鼠因其遗传背景纯净,个体间基因差异小,实验结果的重复性和可比性强,被广泛用于科学研究中。我们对卵巢衰老的很多认知,也都建立在它的实验数据之上[7]。</p> <p>然而,研究通过详尽的跨物种数据对比,点出了一个局限:在模拟人类卵巢衰老上,金标准小鼠模型失灵了,它和人类卵巢的衰老特征大有不同:</p> <p align="center"></p> <p>种种差异意味着,过去基于C57BL/6小鼠的卵巢抗衰研究,其实都是在一个更柔软、无纤维化阻碍的理想化环境中寻找解法,这也是很多候选药物在小鼠中疗效显著,进入人体临床试验后却失效的可能原因之一。</p> <p>当然,小鼠作为常用科研模型的时代,并非就此终结,它依然是研究基础机制的重要工具,只是我们更清楚地看到了它的局限性。</p> <p align="center"></p> <p align="center"><strong>思路转变:修复卵巢环境,重塑健康生态</strong></p> <p>针对卵巢生态环境的崩坏,科学家们也发现了新的潜在干预方向:</p> <p><strong>No.1</strong></p> <p><strong>靶向纤维化:给卵巢松土,重塑物理环境</strong></p> <p>核心就是让卵巢重新变软有弹性,打通营养和信号的传递通道。目前已有多条可行路径,尤其是可以大幅缩短临床转化周期的老药新用:</p> <p>抗纤维化药物:抗肺纤维化药物吡非尼酮,在更加高龄的小鼠中(开始出现明显胶原沉积),可以抑制纤维化,改善卵巢功能;降糖药二甲双胍也可以减少胶原沉积,预防卵巢纤维化[8-9]。</p> <p>体外激活技术(IVA):通过物理切割破坏卵巢组织的Hippo通路(细胞通过它感知环境拥挤与物理压力),唤醒休眠的原始卵泡,已在临床中帮助部分高龄女性获得优质卵子[10]。</p> <p align="center"></p> <p align="center">图注:Hippo信号通路紊乱与Akt激活作为不孕症治疗方法</p> <p><strong>No.2</strong></p> <p><strong>靶向神经调控:为卵泡降噪,消除信号干扰</strong></p> <p>核心是抑制过度兴奋的交感神经,恢复卵泡发育的精准信号调控。</p> <p>神经信号抑制剂:β受体抑制剂可以通过阻断卵巢内的β-肾上腺素能受体,帮助恢复卵巢的正常节奏,是调节卵巢功能的潜在方向[11]。</p> <p>跨界临床技术应用:治疗高血压的“去肾交感神经消融术(RDN)”,已被创新性地用于多囊卵巢综合征(PCOS)患者,改善代谢异常与神经状态[12]。</p> <p>这两种策略相辅相成:当卵巢环境变舒展,内源性激素就能顺畅循环,帮助维持日常精力与皮肤状态;信号干扰减少则让月经、排卵节奏更稳,减少内分泌波动带来的不适。</p> <p align="center"><b>小结</b></p> <p>对药企/研发人来说,这个研究的价值更多是明确了人类卵巢独有的衰老微环境特征(纤维化、神经异常活跃)。未来是否可以在现有卵巢类器官中复现这组人体特征,或基于此重定向已有药物,以降低试错风险、节省筛选成本,或许都是值得考虑的方向。</p> <p>而对每一位女性来说,从现在起就提高对卵巢健康的关注,从日常开始养护:控制体重(减少炎症)、远离烟酒(损伤卵巢基质)[13-14]。当卵巢的宜居地不再萎缩、土壤不再硬化、信号不再嘈杂、居民不再失联,女性由内而外的生命力和健康状态,自然会稳稳回归~</p> <p><b>参考文献</b></p> <p>[1]Gaylord, E. A., Foecke, M. H., Samuel, R. M., Soygur, B., Detweiler, A. M., McIntyre, T. I., Dorman, L. C., Borja, M., Laird, A. E., Arjyal, R., Du, J., Gardner, J. M., Neff, N., Fattahi, F., & Laird, D. J. (2025). Comparative analysis of human and mouse ovaries across age. Science, 390(6778), eadx0659. </p> <p><u>https://doi.org/10.1126/science.adx0659</u></p> <p>[2] Wang, X., Wang, L., & Xiang, W. (2023). Mechanisms of ovarian aging in women: a review. Journal of Ovarian Research, 16(1), 67. </p> <p><u>https://doi.org/10.1186/s13048-023-01151-z</u></p> <p>[3] Yan, F., Zhao, Q., Li, Y., Zheng, Z., Kong, X., Shu, C., Liu, Y., & Shi, Y. (2022). The role of oxidative stress in ovarian aging: a review. Journal of Ovarian Research, *15*(1), 100. </p> <p><u>https://doi.org/10.1186/s13048-022-01032-x</u></p> <p>[4] Dong, T., Li, N., Wang, H., Zhu, H., Gao, Y., Liu, Y., Fang, F., Fu, X., Si, P., Li, C., Li, M., Wang, F., Zhao, S., Guo, T., Cui, L., Jiang, X., Liu, X., Zhao, H., Qin, Y., . . . Jiao, X. (2025b). Stress granule clearance mediated by V-ATPase-interacting protein NCOA7 mitigates ovarian aging. Nature Aging, 5(8), 1548–1567. </p> <p><u>https://doi.org/10.1038/s43587-025-00927-w</u></p> <p>[5] Li, L., Hua, R., Hu, K., Chen, H., Yin, Y., Shi, X., Peng, K., Huang, Q., Qiu, Y., Li, X., Liu, Q., Liu, S., & Wang, Z. (2023). SIRT6 deficiency causes ovarian hypoplasia by affecting Plod1‐related collagen formation. Aging Cell, 23(2), e14031. </p> <p><u>https://doi.org/10.1111/acel.14031</u></p> <p>[6] Zhai, Y., Wang, T., Han, J., Wu, M., & Gong, M. (2025). Lysosomal control of proteostasis and reproductive capacity by conserved LMD-3 protein in C. elegans. Science Advances, 11(48), eadz3192. </p> <p><u>https://doi.org/10.1126/sciadv.adz3192</u></p> <p>[7] Bryda, E. C. (2013). The Mighty Mouse: The impact of rodents on advances in biomedical research. Missouri Medicine, 110(3), 207–211.</p> <p>[8] Umehara, T., Winstanley, Y. E., Andreas, E., Morimoto, A., Williams, E. J., Smith, K. M., Carroll, J., Febbraio, M. A., Shimada, M., Russell, D. L., & Robker, R. L. (2022). Female reproductive life span is extended by targeted removal of fibrotic collagen from the mouse ovary. Science Advances, 8(24), eabn4564. </p> <p><u>https://doi.org/10.1126/sciadv.abn4564</u></p> <p>[9] Landry, D. A., Yakubovich, E., Cook, D. P., Fasih, S., Upham, J., & Vanderhyden, B. C. (2022). Metformin prevents age-associated ovarian fibrosis by modulating the immune landscape in female mice. Science Advances, 8(35), eabq1475. </p> <p><u>https://doi.org/10.1126/sciadv.abq1475</u></p> <p>[10] Kawamura, K., Cheng, Y., Suzuki, N., Deguchi, M., Sato, Y., Takae, S., Ho, C., Kawamura, N., Tamura, M., Hashimoto, S., Sugishita, Y., Morimoto, Y., Hosoi, Y., Yoshioka, N., Ishizuka, B., & Hsueh, A. J. (2013). Hippo signaling disruption and Akt stimulation of ovarian follicles for infertility treatment.Proceedings of the National Academy of Sciences, 110(43), 17474–17479. </p> <p><u>https://doi.org/10.1073/pnas.1312830110</u></p> <p>[11]Fernandois, D., Lara, H., & Paredes, A. (2012). Blocking of Β-Adrenergic receptors during the subfertile period inhibits spontaneous ovarian cyst formation in rats. Hormone and Metabolic Research, 44(09), 682–687. </p> <p><u>https://doi.org/10.1055/s-0032-1304607</u></p> <p>[12] Schlaich, M. P., Straznicky, N., Grima, M., Ika-Sari, C., Dawood, T., Mahfoud, F., Lambert, E., Chopra, R., Socratous, F., Hennebry, S., Eikelis, N., Böhm, M., Krum, H., Lambert, G., Esler, M. D., & Sobotka, P. A. (2011). Renal denervation: a potential new treatment modality for polycystic ovary syndrome? Journal of Hypertension, 29(5), 991–996. </p> <p><u>https://doi.org/10.1097/hjh.0b013e328344db3a</u></p> <p>[13] Koufakis, T., Patoulias, D., Kaur, K. K., & Popovic, D. S. (2025). Editorial: Weighing the impact of being overweight on female reproductive function and fertility. Frontiers in Reproductive Health, 7, 1554284. </p> <p><u>https://doi.org/10.3389/frph.2025.1554284</u></p> <p>[14] Cheng, S., Qin, X., Han, Z., Sun, X., Feng, Y., Yang, F., Ge, W., Li, L., Zhao, Y., De Felici, M., Zou, S., Zhou, Y., & Shen, W. (2018). Nicotine exposure impairs germ cell development in human fetal ovaries cultured in vitro. Aging, 10(7), 1556–1574. </p> <p><u>https://doi.org/10.18632/aging.101492</u></p>
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